Mennyiségi elemzése a glükóz - Referencia vegyész 21

Mennyiségi meghatározását a szén és hidrogén, amit el kell végezni eredményeivel összhangban a minőségi elemzés glükóz mindig végre ugyanabban az időben, gyakran egy klasszikus módszer Liebig a következő. [C.173]

Az elmúlt években, köszönhetően az enzimek funkciójának ionszelektív elektródok képes jelentősen bővíteni, és alkalmassá teszik őket a gyors klinikai analízis glükóz, karbamid, aminosavak és más metabolitok. Ezek az elektródok úgynevezett enzim elektródok, vagy elektrokémiai szenzorok. Létrehozása elektródák ezekkel a tulajdonságokkal azért lehetséges, mert a magasan specifikus enzimek, azaz a. E. Az a képesség, hogy katalizálja a egyetlen anyag sok száz, sőt több ezer anyagok közeli kémiai jellegű. Ha például, az enzim katalizálja a reakciót. amelynek során a pH-változások a közeg, a pH-érzékeny elektród. filmbevonatú gél, vagy egy polimer, amely ezt az enzimet, lehetővé teszi a mennyiségi meghatározását csak az anyag, amely alakítja az intézkedés alapján az enzim. Karbamidból jelenlétében ureáz enzimmel MH + ionok képződnek. Ha az ion-szelektív elektród. érzékeny ion NH. fedezésére film. tartalmazó ureáz, akkor használja lehet meghatározni karbamid kvantitatív. Enzim elektródok - egy példa a növekvő gyakorlati alkalmazása enzimek a tudomány és a technika. [C.138]

Minden injekciós gyógyszerek sterilizálás előtt kell alávetni kémiai hitelességének ellenőrzését, és a jelenléte az analitikai kémikus egy gyógyszertár - és kvantitatív anali-Ay. novocain oldatot. atropin-szulfátot. kalcium-klorid. glükóz és nátrium-klorid-oldattal izotópos semmilyen körülmények között feltétlenül kvalitatív (azonosító) és mennyiségi elemzést. [C.305]

A molekulatömeg glükóz. Sok különböző módszerekkel meghatározható a molekulatömeg a szerves szilárd anyag. Leggyakrabban a molekulatömeg által meghatározott gőz sűrűség az anyag vagy oszmométerek módszerrel. Ezek a módszerek már megtanulták a diákok során a fizika és a mennyiségi elemzés. Szükségtelen ismétlések elkerülése, nem fogjuk leírni ezeket a technikákat, de megemlítjük, csak röviden, hogy a molekulatömeg glükóz, meghatározva a cryoscopic módszerrel. volt egyenlő 180. [c.176]

A glutamin szövet-szelektivitás az érzékelő is megítélni a mennyiségi elemzés eredményeit a vizsgálati minták az agy-gerincvelői folyadék (CSF) [7]. CSF mintákat, miután áthaladt egy kationcserélő eltávolítására háttér ammóniát, ami befolyásolja a jel a bioszenzor, a koncentráció a glutamin mérhető jó pontossága és reprodukálhatósága egész klinikailag fontos tartományban. Ezekben a mérések, egy működő pufferoldat beadandó, hogy elnyomja a zavaró jód-acetamid reakciót, glükóz. Úgy tűnik, ennek eredményeként glikolízis vesesejt glükózból termelnek savat. amely befolyásolja a lehetséges a pH-érzékeny ammónia szenzor. Iodoacetamide ismert inhibitora a glikolízis, és azt találták, hogy hatékonyan gátolja a glutamin bioszenzor érzékenység glükóz. Meghatározása glutamin a CSF-ben hajthatjuk végre koncentrációtartományban 2,2-10 -1,29-10 M átlagos relatív standard eltérés 5,6%. Egy ilyen szenzor is hasznos lehet, például, a tanulmány Reye-szindróma, ahol a magas szintű glutamint tekintik diagnosztikai kritérium. [C.37]

Mivel nem tudjuk, hogy az abnormális egység található, ahol a láncban. Feltesszük, első közelítésben. Ugyanilyen valószínű, hogy bármilyen helyzetben. Ezután, ha egy abnormális linket molekulánként (bizonytalanság metiláció) leáll az enzimatikus hidrolízis az átlagos közepén egyes láncok. Ez azt jelenti, hogy a hozam a kapott glükóz 50% -a a teljes tartalom a mintában. Ez az eltérés a várt eredményeket a rendszeres poliszacharid (100%), akkor lehet észlelni még a legkeményebb elemzési módszereket. A tényleges megállapításának pontosságát glükóz standard módszerekkel van néhány százalék. Mondjuk óvatosan 5%. Ez azt jelenti, hogy ha megkapjuk a glükóz mennyiségi kitermeléssel a enzimatikus hidrolízisével a poliszacharid, és figyelembe véve az 5% hibát, azt mondhatjuk, hogy, legalább. 90% -a a polimer molekulák a mintában van egy szabályos szerkezetű és nem tartalmaznak kóros egységeket. Így. hivatkozva a példánkban egy rendszeres, létrehozott metiláció, nem állítja, a jobb, amely a poliszacharid-molekula. nem tartalmaz semmilyen rendellenes szinten. és szabályosságát telepített enzimatikus hidrolízis, lehetővé teszi számunkra, hogy azt mondják, hogy legalább 90% -a rendszeres mintavétellel molekulák a szigorú értelemben vett. Mennyiségi eltérés, de nyilván ez fordult minőség. [C.105]

A mennyiségi elemzést a cukrok keveréke, az általunk kifejlesztett egy bór-hidrid-nolyarimetrichesky módszerrel. Ez a módszer is alkalmazható, így például, az elemzés a keverékek szacharózt és glükózt. Nem rendelkező egy aldehidcsoportot. Szacharóz nem reagál nátrium borgidri-ház vagy kálium ezáltal. az optikai forgatás feldolgozása során ez a reagens nem változik. Glükóz azonos a bór-hidrid visszaáll szorbit, optikai forgatóképessége, amely lényegében nullával egyenlő. Így. optikai forgatóképessége a keveréket vissza ugyanolyan mennyiségű forgatások szacharózt és glükózt, és optikai forgatóképesség helyreállítása után jön létre, csak szukrózzal. Két mérést forgási (feldolgozás előtt és után bór-hidrid) biztosítja a szükséges adatokat kiszámításához az elegy összetétele. Némileg eltérő épített az elegy analízise a glükóz és fruktóz. Itt a cukor is vissza-bór-hidrid. Recovery kell végezni a mennyiségi változat, ez lehetővé teszi, hogy meghatározza a cukor mennyiségét. Az arány a glükóz és a fruktóz a keverékben meghatározzuk a forgatást. A relatív hiba ezek a meghatározások 1-3%. [C.319]

Mennyiségi elemzésének cukrok keveréke tervezték borgidridpo-polarizációs-metrikus módszerrel. amely meghatározható keveréke szacharózt és glükózt, glükóz és fruktóz. [C.352]

Felmelegítjük 60 ° C-oszlopon (45x1,5 cm), amelyet előzőleg öntjük szintre 43 cm-es Whatman márka cellulózpor CP-12 (lásd ábra. Sec. And B, kromatográfia cellulóz) használt elválasztására és mennyiségi elemzését szacharidok, épített 4-15 glükóz egységből [24]. A mobil fázist szivattyúzzák a készülék a gradiens elúció. mely egy Erlenmeyer-lombikban 250 ml, tele [c.84]

Sokkal nehezebb megállapítani még a legegyszerűbb képlet a szerves anyag. Nem disszociál ionokra oldatban, mint például a glükóz VOS, 20b erre van, hogy nem csak a minőségi, hanem mennyiségi elemzést. [C.16]

Strain és munkatársai [48, 50] bizonyultak kötés a festék a szálak, megfestik a részlegesen hidrolizált cellulóz por Remazolovym Brilliant Blue R, és vetjük alá mikrobiológiai romlás alatt Se11i1otopaz is1a. Ezek sikerült izolálnunk egy színes oldható terméket cellulóz lebomlásához és bizonyítani kromatográfiás analízis. ez egy homogén anyag, és hogy a teljes hidrolízis után kénsavas ebből kapott glükóz. Ezt követően, a hidrolizátumot a megfestett cellulózt izoláltunk, homogén vegyületet. amely 1 mol festéket és a glükóz. Ezek a vegyületek vetettük alá kimerítő metil-jodiddal és ezüst-oxiddal dimetil-formamidban, majd kötéséhez a festék hidrolizáljuk lúgos, és a metii - sav. Ha összehasonlítjuk a szintetikus metil-glükóz ez kiderült, hogy glükóz-helyzetben szubsztituált 2 és 4 A teljes mennyiségi elemzés azt mutatta, hogy a helyettesítésre a hidroxilcsoport atom 60%, és mindkét végén a lánc, 20% [534]. [C.317]

A glükóz-oxidáz kapjuk ipari méretekben, és használják különösen a mennyiségi elemzést a glükóz cukrok keveréke. Fontos tulajdonsága az a képesség, hogy az enzim aktív csoport - flavin koenzim - közvetlenül reagál a molekuláris oxigénnel. [C.207]

A hatása szerkezete és polaritása NF szelektivitás szétválasztás. Azt találtuk, hogy a legmegfelelőbb elemzésére NF fenolok. eltérő szénatomok száma az oldalláncban. a Apia -band és L dimetil, és hogy külön szerint mértéke befolyásolja a sztérikus gátlás az OH-csoport - vagy eritrit etilenmerkapto-a-glükóz. A szükségességét kalibrációs mennyiségi elemzésének detektálással hővezető. [C.137]

Mennyiségi analízis glikozidok reagáltatva antron eluálás után a kromatogramot, és hasítását a glükóz. [C.600]

A fibrinogén fibrinné bekövetkezik hatására a proteolitikus enzim trombin, ami normál körülmények között, mielőtt az aktiválási van a plazmában formájában elődje - protrombin. Első protrombin és trombin izoláltunk tisztított formában Sigersom et al. [160] jelenleg megszerzésének nagytisztaságú készítmények a protrombin és trombin használt jobb módszerek [161-163]. Lamy és VQ [1641 volt mélyreható fizikai-kémiai vizsgálata protrombin protrombin molekulatömegű, aszerint, hogy azok az adatok, 62 700. szerint mennyiségi elemzést [165] A szénhidrát-rész protrombin tartalmaz 6,5% hexózok, 1,7% hexózaminokat, nagyon kevés a pentózok és nem tartalmaz hex-Ronova savak. A protrombin trombinná lehet aktiválni két módon [159] 1) sókat nagy koncentrációban (25% -os nátrium-citrát) és 2) adalékanyagok a szövetet és plazma-faktorok, protrombin megoldásokat. Molekula, amely képes a trombin aggregáció, így a széles körben különböző mennyiségben, az molekulatömegű. A szakirodalomban. Úgy tűnik, a minimális molekulatömegű trombin monomer mintegy 8000 [159, 166]. Loránd és mtsai. [167] kimutatták, hogy a protrombin aktiválását 25% nátrium-citrát protrombin hasítjuk szénhidrát. A korábbi szakaszában a folyamat a protrombin aktiválását 40-60% szénhidrátot és körülbelül azonos mennyiségű nitrogén teszi oldódik triklór-ecetsav. A száma hexóz és hexózamin, amelyek oldódnak triklór-ecetsav, a protrombin aktiválását. szintén a 40-60%. Miller és Sigers] 168] vizsgáltuk egy szénhidrátrész. lehasítjuk a protrombin aktiválás hatására. A trombin aktivált keverékét kicsapódott ammónium-szulfát. és a felülúszót kinyerjük szénhidrát frakció. A hidrolízis a szénhidrát frakció csak a glükóz találtak a hidrolizátumban. Mivel nem hexózamin nem található, azt javasolta, hogy a folyamat a protrombin aktiválását hexózamin enzimatikusan hasított hexózokból. [C.253]

Helyesen megválasztott porozitás a granulátum és gondosan tervezett kísérleti körülmények között. Meg lehet osztani nagyon hasonló molekulák, vagy épp ellenkezőleg, a molekulák tartozó teljesen más osztályokba. Különösen nehéz elválasztani a különböző anyagok keveréke. de ilyen körülmények között ez nem olyan fontos a nagy áramlási sebességet. Mivel a kis oszlopok általában úgy kapjuk kvantitatív kitermeléssel, elválasztás után a komponensek a nem-átfedő csúcsokat lehet alávetni kvantitatív analízissel nem specifikus módszerek. Ez lehetővé teszi, hogy osztódnak. majd sómentesítjük Sephadex 0-15 sor egyszerű cukrok. RA-finozu például maltóz és glükóz [28]. Ez a felosztás alapja. általában különbségeihez molekulatömegű analitokra. Néha azonban ez az egyéb okok miatt. okozva retenciós bizonyos molekulák az oszlopban, például adszorpciós poláros oldott anyag egy nem-poláris oldószerben. [C.223]

A mennyiségi elemzésének alloszterikus szabályozás ATP, ADP és az AMP nyers kivonatokban tartalmazó glyukozofosfatizomerazu. fontos, hogy elkerüljük jelentős változásokat a koncentráció F-6-P eredményeként izomerizációs. Ahhoz, hogy ez lehet az oldathoz 0,2 m glükóz oldatot semlegesítjük -6-Phos-fátyol (G-6-P) és 20 egység. G-6-P-izomeráz per 1 ml. 1 órán belül, szobahőmérsékleten 0,05 M lesz oldatban F-6-P és 0,15 M G-6-P. Nemzetközi egység elfogadta az enzimmennyiség. amely foszforilezi 1 mikromol F-6-P 1 perc a fent leírt feltételek 25 ° C-on [DAz4o-L2-6,22-10 = (mikromól 1 ml) = -2 mikromól per küvetta]. [C.398]

Enzimatikus immunoassay módszerrel. Hozzáadása 10-20 g mintát (puffer. Szérum vagy teljes vér) 1 ml enzim reagenst (előállítva 0,1 M nátrium-foszfát-puffer. PH-érték 7,0 és 0,2 mól nátrium-klorid, 0,2-1, 0 mg konjugátumot [teofillin - peroxidáz] 100 mg glükóz 2 g nem-immun birka IgG). A kapott elegyet merítettük régió a tesztcsík (4x90 mm) tartalmazó immobilizált anti-teofillin (30 g / cm), és az oldószert hagyjuk emelkedni a kapilláris erők ellentétes élére csíkokat (ez 10 percet vesz igénybe). Transzfer a csíkot a fejlesztő (elő 0,01 M nátrium-foszfát-pufferrel. PH-érték 7,0, tartalmazó 1 liter 0,02 mól nátrium-klorid, 0,5 g Triton QS-44 400 mg 4-kloronaftolt 0,05 mól glükóz 2 g szarvasmarha-szérumalbumin). 5 perc eltelte után a papír a kék színezett régió formájában egy lapos szalag, vagy rakéta. Magasság színű régió koncentrációjával arányos az analit. A kvantitatív analízis, a kalibrációs görbét a korábban. tükrözve a függőség a magassága a színes peremét a koncentrációja a teofillin. [C.135]

Anélkül, hogy részletesen, a mennyiségileg legszélesebb körben enzimet tartalmazó vezetőképes szenzorok több fajta használják a gyógyászatban, hogy meghatározzuk a glükóz tartalom. Ezek alapján azt kell kidolgozni számos eszköz, például egy olcsó, pontos és megbízható eszköz az in vivo vizsgálatokban. Úgy véljük, hogy a fő felhasználási fognak találni a vércukorszint szabályozásával cukorbetegeknél. Kellően pontos szabályozása cukorszint a betegség, úgy tűnik, hogy vezet a fejlődés hosszú távú, életveszélyes mellékhatások a diabétesz. Érzékelők segítségével lehetővé teszik közel vezérlő áramkör a berendezésben a mesterséges hasnyálmirigy. [C19]